GS AntiQ qPCR SYBR Green Master Mix

　　GS AntiQ qPCR SYBR Green Master Mix

　　保存条件：

　　-20℃保存 12 个月。

　　产品简介：

　　本产品是采用 SYBR Green I 嵌合荧光法进行 qPCR 反应的专用试剂。产品中包含修饰的新型热启动 GS AntiQ DNA polymerase 和精心优化的 Buffer，能有效抑制低温下的非特异性扩增，大大提高了反应特异性和扩增效率，能够在更宽广的范围内进行准确定量。此外，本产品根据不同的仪器型号配有两种 ROX Reference Dye（High/Low），用来校正仪器孔间的荧光误差。

　　产品特点：

　　高特异性：采用修饰的新型热启动 GS AntiQ DNA polymerase 和精心优化的 Buffer；

　　操作简便：2×预混液中包含有 qPCR 反应所需所有组分，只需加入模板、引物、ROX Reference Dye 和水即可进行反应。

　　适用范围及适用机型：

　　本产品适用于试剂盒提取的基因组 DNA、cDNA、质粒 DNA 和λDNA 等样本的扩增定量。

　　注意事项：

　　1. 使用前请充分溶解混匀，尽量避免反复冻融，以免酶活下降；

　　2. 本产品中含有 SYBR Green I，需避光保存，使用时尽量避免强光照射；

　　3. 为了避免气溶胶污染，建议使用核酸清洁剂对实验台面及操作环境进行清洁；

　　4. 为不影响后续实验，建议做预实验检查引物有效性和特异性；

　　5. 上机前，注意消除体系中的气泡，以免对结果造成影响。

　　注：熔解曲线使用仪器默认程序即可。

　　结果分析：

　　1. NTC（No Template Control，无模板阴性对照）：若 NTC 的 CT 值大于 35 或无 CT，则体系不存在污染；若 CT 值小于 35，则体系可能存在污染或引物不特异，形成引物二聚体，建议清洁实验环境、更换无菌水、检查引物是否污染，或适当降低引物浓度、优化引物设计。

　　2. 扩增曲线及 CT 值：标准扩增曲线呈光滑的“S”型。一般情况下目的基因 Ct 值在 20~30 之间，内参 Ct 值在 15~20 之间。若 Ct 值较小，建议稀释模板；若 Ct 值较大，建议提高模板浓度或增大反应体系；若 Ct 值大于 35，检测结果无法定量分析基因的表达量，但可用于定性分析。

　　3. 熔解曲线：标准熔解曲线呈单峰。若熔解曲线出现双峰或者多峰，可能存在污染、引物二聚体或非特异扩增，建议降低引物浓度或优化引物设计。

　　常见问题与解决办法

　　Q1：无 Ct 值出现？

　　A1：

　　(1) 采集荧光信号的步骤有误。检查程序设置，两步法扩增在退火延伸步骤采集信号，三步法扩增在延伸阶段采集信号；

　　(2) 模板或 ROX 使用错误。当 ROX 浓度太低或太高时，Ct 值可能显示为 Unknown 或空白，根据仪器类型选择合适的 ROX；

　　(3) 引物或模板降解。PAGE 电泳检测引物完整性，琼脂糖凝胶电泳检测模板 DNA 或 RNA 的质量及完整性，RNA 模板建议重新逆转录获得 cDNA，cDNA 应尽快使用；

　　(4) 模板量不足。适当增加模板用量或重新制备高浓度模板。

　　Q2：实验重复性差？

　　A2：

　　(1) 加样存在误差。使用性能较好的移液枪，配制预混液后分装，减少移液误差；

　　(2) 荧光定量 PCR 仪器不同位置温度控制不一致。定期校准仪器；

　　(3) 模板浓度低或拷贝数低。适当增加模板用量。

　　Q3：扩增曲线形状异常？

　　A3：

　　(1) 扩增曲线不光滑。信号太弱，经系统矫正后产生，可提高模板浓度重复实验；

　　(2) 扩增曲线断裂、骤降。模板浓度较高或反应管内留有气泡,减小基线终点(CT 值-4)重新分析数据，或上机前离心并仔细检查反应管内是否有气泡残留；

　　(3) 分析数据时通道选择不正确。如没有在体系中加入 ROX，但分析时在仪器设置中选择了 ROX 选，应根据具体操作体系选择合适的分析条件。

　　Q4：同一试剂在不同仪器上产生不同的曲线？

　　A4：

　　分析扩增效率，灵敏度，特异性，如果扩增效率在 90%~110%，且都是特异性扩增，则数据均可分析使用。